07. Вплив ярусів живців пробіркових рослин і живильного середовища на індукцію бульбоутворення картоплі in vitro сортів різних груп стиглості

https://doi.org/10.31073/agrovisnyk201805-07
Балашова Г. С., Лавриненко Ю. О., Вожегова Р. А., Котов Б. С.
Сторінки: 41-46.

Повна стаття: 
Короткий огляд
Мета. Визначити оптимальний режим бульбоутворення сортів картоплі in vitro різних груп стиглості залежно від ярусів живців пробіркових рослин і складу живильного середовища. Методи. Комплексне використання лабораторного, математико­статистичного, розрахунково­порівняльного методів і системного аналізу. Результати. Наведено експериментальні дані щодо впливу ярусів живців пробіркових рослин і складу живильного середовища на індукцію бульбоутворення під час розмноження різних за групою стиглості сортів картоплі в культурі in vitro. Висновки. Кращі показники продуктивності отримано за вирощування мікробульб середньостиглого сорту картоплі Явір на живильному середовищі Інституту зрошуваного землеробства НААН у рослин з 1 – 3­го ярусів живця. Так, маса середньої мікробульби становила 502 мг; маса мікробульб на 1 рослину — 509,8 мг. Вихід мікробульб масою понад 350 мг — 84,7%, інтенсивність бульбоутворення становила 101,5%.


Ключові слова: картопля, сорт, культура in vitro, ярус живця, мікробульба, продуктивність.



Бібліографія
  1. Фесенко Г.П., Козловський І.Г. Насінництво картоплі на півдні України. Інтеграція науки з виробництвом — головний шлях збільшення збору сільськогосподарської продукції, зниження витрат на її виробництво. Миколаїв, 1997. С. 77–79.
  2. Бондарчук А.А. Наукове забезпечення виробництва картоплі в УкраФїні. Картоплярство. 2004. Вип. 33. С. 3–9.
  3. Бугаєва І.П., Черниченко О.О., Черниченко І.І. Результати випробування сортів картоплі віт­чизняної селекції в умовах зрошення на півдні України. Зрошуване землеробство. Херсон, 2007. Вип. 47. С. 142–146.
  4. Бондарчук А.А. Виродження картоплі та прийоми боротьби з ним. Біла Церква, 2007. 103 с.
  5. Rosell G., De Bertoldi F.G., Tizio R. In vitro mass tuberisation as a contribution to potato micropropagation. Potato Research. 1987. V.30(1). P. 111–116.
  6. Бугаєва І.П., Підкопай І.І., Добринчук Л.В. Бульбоутворення та продуктивність рослин in vitro залежно від фоторежиму та елементів культурального середовища. Таврійський наук. вісн. Херсон, 2004. Вип. 33. С. 48–55.
  7. Бугаєва І.П., Підкопай І.І., Добринчук Л.В. Вплив фото- та температурного режиму культивування рослин in vitro на процес бульбоутворення картоплі. Таврійський наук. вісн. Херсон, 2004. Вип. 35. С. 30–33.
  8. Балашова Г.С. Влияние температуры, фотопериода и концентрации микросолей в питательной среде на продуктивность картофеля в культуре in vitro. Молодой ученый. Казань, 2015. № 14. С. 675–678.
  9. Эрастова М.А., Федорова Ю.Н. Подбор питательной среды при клональном размножении in vitro. Картофель и овощи. 2008. № 4. С. 28.
  10. Rabbani A., Askari B., Abbasi N.A. et al. Effect of growth regulators on in vitro multiplication of potato. Int. J. Agric. Biol. 2001. Т. 3. № 2. Р. 181–182.
  11. Aksenova N.P., Konstantinova T.N., Lozhni­kova V.N. et al. Interaction between day length and phytohormones in the control of potato tuberization in the in vitro culture. Russian J. of Plant Physiology. 2009. V. 56(4). P. 454–461.
  12. Dragićević I., Konjević R., Vinterhalter B. et al. The effects of IAA and tetcyclacis on tuberization in potato (Solanum tuberosum L.) shoot cultures in vitro. Plant growth regulation. 2008. V. 54(3). P. 189–193.
  13. Badr A., Angers P., Desjardins Y. Comp­re­hen­sive analysis of in vitro to ex vitro transition of tissue cultured potato plantlets grown with or without sucrose using metabolic profiling technique. Plant cell, tissue and organ culture (PCTOC), 2015. V. 122(2). P. 491–508.
  14. Бугаєва І.П., Сніговий В.С. Культура картоплі на півдні України. Херсон, 2002. 176 c.
  15. Педько О.І. Куди поділися віруси після оздоровлення картоплі? Картоплярство. Київ, 1997. Вип. 27. С. 190–193.
  16. Miller P.R., Amirouche L., Stuchbury T., Matthews S. The use of plant growth regulators in micropropagation of slow-growing potato cultivars. Potato Research. 1985. V. 28(4). P. 479–486.
  17. Mahmoud O., Nazarian F., Struik P.C. Effects of temperature fluctuation during in vitro phase on in vitro microtuber production in different cultivars of potato (Solanum tuberosum L.). Plant cell, tissue and organ culture (PCTOC). 2009. V. 98(2). P. 213–218.
  18. Shambhu P.D., Lim H.T. Microtuberization of potato (Solanum tuberosum L.) as Influenced by supplementary nutrients, plant growth regulators, and in vitro culture conditions. Potato Research. 2012. V. 55(2). P. 97–108.
  19. Radouani А., Lauer F.I. Effect of NPK Media Concentrations on in vitro potato tuberization of cultivars Nicola and Russet Burbank. American J. of Potato Research. 2015. V. 92(2). P. 294–297.
  20. Salem J., Hassanein A.M. In vitro propagation, microtuberization, and molecular characterization of three potato cultivars. Biologia Plantarum. 2017. V. 61(3). P. 427–435.
  21. Методичні рекомендації щодо проведення досліджень з картоплею; підгот.: В.С. Куценко, А.А. Осипчук, А.А. Подгаєцький та ін. Ін-т картоплярства. Немішаєве, 2002. 183 с.
  22. Оздоровлення картоплі в культурі in vitro: наук.-метод. реком.; підгот.: Р.А. Вожегова, Ю.О. Лав­риненко, Г.С. Балашова та ін. Ін-т зрош. землероб. Херсон, 2013. 20 с.
  23. Оптимизация приемов оздоровления, размножения и защиты семенного картофеля от вирусной инфекции: метод. указания. Минск: БелНИИЗР, 1996. 16 с.
  24. Биотехнологические методы получения и оценки оздоровленного картофеля: метод. реком.; подгот.: Л.Н. Трофимец, В.Б. Бойко, Т.В. Зей­рук и др. Москва, 1988. 37 с.
  25. Вожегова Р.А., Лавриненко Ю.О., Маляр­чук М.П. та ін. Методика польових і лабораторних досліджень на зрошуваних землях; за ред. Р.А. Вожегової. Херсон: Ін-т зрош. землероб., 2014. 286 с.